Biocompatible Flavone-Based Fluorogenic Probes for Quick Wash-Free Mitochondrial Imaging in Living Cells
Source abstract
Abstract
Mitochondria, vital organelles existing in almost all eukaryotic cells, play a crucial role in energy metabolism and apoptosis of aerobic organisms. In this work, we report two new flavone-based fluorescent probes, MC-Mito1 and MC-Mito2, for monitoring mitochondria in living cells. These two probes exhibit remarkably low toxicity, good cell permeability, and high specificity; these probes complement the existing library of mitochondrial imaging agents. The new dyes give nearly no background fluorescence, and their application does not require tedious postwashing after cell staining. The appreciable tolerance of MC-Mito2 encourages a broader range of biological applications for understanding the cell degeneration and apoptosis mechanism.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline
Research context
OpenAlex topics: Molecular Sensors and Ion Detection · Mitochondrial Function and Pathology · Photoreceptor and optogenetics research
SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.
Affiliations
Department of Chemistry and Maurice Morton Institute of Polymer Science, ‡Department of Biomedical Engineering, and §Department of Biology, The University of Akron, Akron, Ohio 44325, United States
Funding
National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering
References (49)
Show source-provided references
1. Yuste R. · Nat. Methods · 2005 · 2 · 90210.1038/nmeth1205-902 ↗
2. Borisov S. M. · Chem. Rev. · 2008 · 108 · 42310.1021/cr068105t ↗
3. Yang Y. · Chem. Rev. · 2013 · 113 · 19210.1021/cr2004103 ↗
4. Henze K. · Nature · 2003 · 426 · 12710.1038/426127a ↗
5. McBride H. M. · Curr. Biol. · 2006 · 16 · R55110.1016/j.cub.2006.06.054 ↗
6. Karbowski M. · Cell Death Differ. · 2003 · 10 · 87010.1038/sj.cdd.4401260 ↗
7. Ow Y. L. P. · Nat. Rev. Mol. Cell Biol. · 2008 · 9 · 53210.1038/nrm2434 ↗
8. Landes T. · Biochim. Biophys. Acta · 2011 · 1813 · 54010.1016/j.bbamcr.2011.01.021 ↗
9. Dickinson B. C. · Nat. Protoc. · 2013 · 8 · 124910.1038/nprot.2013.064 ↗
10. Johnson L. V. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 1980 · 77 · 99010.1073/pnas.77.2.990 ↗
11. Johnson L. V. · J. Cell Biol. · 1981 · 88 · 52610.1083/jcb.88.3.526 ↗
12. Minamikawa T. · J. Cell Sci. · 1999 · 112 · 241910.1242/jcs.112.14.2419 ↗
13. Shim S. H. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 2012 · 109 · 1397810.1073/pnas.1201882109 ↗
14. Zhang X. F. · J. Org. Chem. · 2013 · 78 · 915310.1021/jo401379g ↗
15. Jiang N. · Chem. Commun. · 2013 · 49 · 1062010.1039/c3cc46143b ↗
16. Dodani S. C. · J. Am. Chem. Soc. · 2011 · 133 · 860610.1021/ja2004158 ↗
17. Cheng G. H. · Analyst · 2013 · 138 · 609110.1039/c3an01152f ↗
18. Miao F. · Biosens. Bioelectron. · 2014 · 55 · 42310.1016/j.bios.2013.12.044 ↗
19. Han J. H. · Chem.—Eur. J. · 2012 · 18 · 1524610.1002/chem.201203452 ↗
20. Singha S. · Dyes Pigm. · 2013 · 99 · 30810.1016/j.dyepig.2013.05.008 ↗
21. Yang W. G. · Chem. Commun. · 2013 · 49 · 342810.1039/c3cc41240g ↗
22. Dai Y. · Chin. Chem. Lett. · 2014 · 25 · 100110.1016/j.cclet.2014.05.020 ↗
23. Hori Y. · Curr. Opin. Chem. Biol. · 2013 · 17 · 64410.1016/j.cbpa.2013.05.015 ↗
24. Lidell M. E. · Nat. Med. · 2013 · 19 · 63110.1038/nm.3017 ↗
25. Griffin B. A. · Science · 1998 · 281 · 26910.1126/science.281.5374.269 ↗
26. Taylor R. C. · Nat. Rev. Mol. Cell Biol. · 2008 · 9 · 23110.1038/nrm2312 ↗
27. Leung C. W. T. · J. Am. Chem. Soc. · 2013 · 135 · 6210.1021/ja310324q ↗
28. Gao M. · Chem. Commun. · 2014 · 50 · 831210.1039/C4CC00452C ↗
29. Hori Y. · J. Am. Chem. Soc. · 2013 · 135 · 1236010.1021/ja405745v ↗
30. Zhuang Y. D. · Angew. Chem., Int. Ed. · 2013 · 52 · 812410.1002/anie.201302884 ↗
31. Hovelmann F. · J. Am. Chem. Soc. · 2013 · 135 · 1902510.1021/ja410674h ↗
32. Rosales T. · J. Phys. Chem. A · 2008 · 112 · 559310.1021/jp7117289 ↗
33. Klymchenko A. S. · New J. Chem. · 2004 · 28 · 68710.1039/b316149h ↗
34. Ercelen S. · Int. J. Biol. Macromol. · 2005 · 35 · 23110.1016/j.ijbiomac.2005.02.002 ↗
35. Demchenko A. P. · Biophys. J. · 2009 · 96 · 346110.1016/j.bpj.2009.02.012 ↗
36. Verma A. K. · Tetrahedron · 2012 · 68 · 852310.1016/j.tet.2012.06.097 ↗
37. Nijveldt R. J. · Am. J. Clin. Nutr. · 2001 · 74 · 41810.1093/ajcn/74.4.418 ↗
38. Magde D. · Photochem. Photobiol. · 2002 · 75 · 32710.1562/0031-8655(2002)075<0327:FQYATR>2.0.CO;2 ↗
39. Klein J. · J. Biol. Chem. · 1999 · 274 · 3479510.1074/jbc.274.49.34795 ↗
40. Qin C. X. · J. Med. Chem. · 2008 · 51 · 187410.1021/jm070352h ↗
41. Liu B. · Chem. Commun. · 2012 · 48 · 286710.1039/c2cc17677g ↗
42. Liu B. · ACS Appl. Mater. Interfaces · 2014 · 6 · 440210.1021/am500102s ↗
43. Yamaguchi T. · Chem. Sci. · 2014 · 5 · 102110.1039/C3SC52704B ↗
44. Kucherak O. A. · Phys. Chem. Chem. Phys. · 2012 · 14 · 229210.1039/c2cp23037b ↗
45. Casey J. R. · Nat. Rev. Mol. Cell Biol. · 2010 · 11 · 5010.1038/nrm2820 ↗
46. Hoye A. T. · Acc. Chem. Res. · 2008 · 41 · 8710.1021/ar700135m ↗
47. de Graaf A. O. · Exp. Cell Res. · 2004 · 299 · 53310.1016/j.yexcr.2004.06.024 ↗
48. Martinou J. C. · Dev. Cell · 2011 · 21 · 9210.1016/j.devcel.2011.06.017 ↗
49. Simonsen C. C. · Biologicals · 1994 · 22 · 8510.1006/biol.1994.1014 ↗