Synthesis of near-Infrared Quantum Dots in Cultured Cancer Cells
This record is marked as retracted by the source. Review the publisher’s notice before using its findings.
Source abstract
Abstract
Intracellular synthesis of near-infrared fluorescent silver sulfide quantum dots in HepG2 cancer cells is demonstrated. By delivering quantum dot precursors into cultured hepatoma carcinoma cells (HepG2 cells), silver sulfide quantum dots with emission efficiency qualified for in vivo imaging were successfully synthesized with the aid of endogenous glutathione in the cells.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline
Research context
OpenAlex topics: Quantum Dots Synthesis And Properties · Nanocluster Synthesis and Applications · Nanoplatforms for cancer theranostics
SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.
References (34)
Show source-provided references
1. Wu Q. · Int. J. Nanomed. · 2012 · 7 · 3433
2. Fan J. · Small · 2010 · 6 · 208010.1002/smll.201000543 ↗
3. Smith A. M. · Nat. Nanotechnol. · 2009 · 4 · 71010.1038/nnano.2009.326 ↗
4. Medintz I. L. · Nat. Mater. · 2005 · 4 · 43510.1038/nmat1390 ↗
5. Robinson J. T. · J. Am. Chem. Soc. · 2012 · 134 · 1066410.1021/ja303737a ↗
6. Welsher K. · Proc. Nat. Acad. Sci.U.S.A. · 2011 · 108 · 894310.1073/pnas.1014501108 ↗
7. Welsher K. · Nat. Nanotechnol. · 2009 · 4 · 77310.1038/nnano.2009.294 ↗
8. Weissleder R. · Nat. Biotechnol. · 2001 · 19 · 31610.1038/86684 ↗
9. Du H. · Nano Lett. · 2002 · 2 · 132110.1021/nl025785g ↗
10. Moreels I. · ACS Nano · 2011 · 5 · 200410.1021/nn103050w ↗
11. Xie R. · J. Am. Chem. Soc. · 2007 · 129 · 1543210.1021/ja076363h ↗
12. Ma X. H. · ChemPhysChem · 2012 · 13 · 253110.1002/cphc.201101013 ↗
13. Khanna P. K. · Mater. Lett. · 2004 · 58 · 103010.1016/j.matlet.2003.08.007 ↗
14. Zhu C. N. · ACS Appl. Mater. Interfaces. · 2013 · 5 · 118610.1021/am303110x ↗
15. Gu Y. P. · J. Am. Chem. Soc. · 2012 · 134 · 7910.1021/ja2089553 ↗
16. Wang C. · Small · 2012 · 8 · 313710.1002/smll.201200376 ↗
17. Hocaoglu I. · J. Mater. Chem. · 2012 · 22 · 1467410.1039/c2jm31959d ↗
18. Yang H. Y. · Nanotechnology · 2013 · 24 · 05570610.1088/0957-4484/24/5/055706 ↗
19. Wang Y. · Chem. Commun. · 2013 · 49 · 332410.1039/c3cc41141a ↗
20. Dameron C. T. · Nature · 1989 · 338 · 59610.1038/338596a0 ↗
21. Kumar S. A. · J. Biomed. Nanotechnol. · 2007 · 3 · 19010.1166/jbn.2007.027 ↗
22. Pérez-Donoso J. M. · PLoS ONE · 2012 · 7 · e3074110.1371/journal.pone.0030741 ↗
23. Monrás J. P. · PLoS ONE · 2012 · 7 · e4865710.1371/journal.pone.0048657 ↗
24. Cui R. · Adv. Funct. Mater. · 2009 · 19 · 235910.1002/adfm.200801492 ↗
25. Sweeney R. Y. · Chem. Biol. · 2004 · 11 · 155310.1016/j.chembiol.2004.08.022 ↗
26. Li Y. · ACS Nano · 2013 · 7 · 224010.1021/nn305346a ↗
27. Kowshik M. · Adv. Mater. · 2002 · 14 · 81510.1002/1521-4095(20020605)14:11<815::AID-ADMA815>3.0.CO;2-K ↗
28. Sturzenbaum S. R. · Nat. Nanotechnol. · 2013 · 8 · 5710.1038/nnano.2012.232 ↗
29. Zheng Z. B. · Bioconjugate. Chem · 2005 · 16 · 59810.1021/bc0499634 ↗
30. Balendiran G. K. · Cell. Biochem. Funct. · 2004 · 22 · 34310.1002/cbf.1149 ↗
31. Schafer F. Q. · Free Radical Biol. Med. · 2001 · 30 · 119110.1016/S0891-5849(01)00480-4 ↗
32. Jin T. · Int. J. Mol. Sci. · 2008 · 9 · 204410.3390/ijms9102044 ↗
33. Yuana J. · Talanta · 2009 · 77 · 185810.1016/j.talanta.2008.10.032 ↗
34. Jiang P. · Biomaterials · 2012 · 33 · 513010.1016/j.biomaterials.2012.03.059 ↗