journal article·2013-06-12

Fabrication of Reduced Graphene Oxide and Sliver Nanoparticle Hybrids for Raman Detection of Absorbed Folic Acid: A Potential Cancer Diagnostic Probe

Chaofan Hu, Yingliang Liu, Jinlan Qin, Guangting Nie, Bingfu Lei, Yong Xiao, Mingtao Zheng, Jianhua Rong

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Abstract

Reduced graphene oxide (RGO) and silver nanoparticle (AgNP) hybrids (RGO-AgNP) were prepared by a facile one-pot method using Poly (N-vinyl-2-pyrrolidone) as reductant and stabilizer. Folic acid (FA) molecules were attached to the RGO-AgNP by physisorption for targeting specific cancer cells with folate receptors (FRs) and using as Raman reporter molecules. The internalization of the FA loaded RGO-AgNP (RGO-AgNP-FA) inside the FRs-positive cancer cell was confirmed by confocal laser scanning and transmission electron microscopy. The Raman signals of the FA in live cancer cells were detected by confocal Raman spectroscope at 514 nm excitation, indicating that the RGO-AgNP-FA material has great potential as a Raman probe for cancer diagnosis in vitro.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline

Research context

OpenAlex topics: Graphene and Nanomaterials Applications · Advanced biosensing and bioanalysis techniques · Nanoparticle-Based Drug Delivery

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Affiliations

College of Science, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, P. R. China

References (62)

Show source-provided references
1. Zhang Y. · Curr. Pharm. Biotechnol. · 2010 · 11 · 65410.2174/138920110792246483 ↗
2. Zang Z. · Appl. Phys. Lett. · 2012 · 100 · 03110810.1063/1.3678188 ↗
3. Zang Z. · IEEE Photonics Technol. Lett. · 2010 · 22 · 72110.1109/LPT.2010.2044994 ↗
4. Zang Z. · IEICE Trans. Electron. · 2011 · 94 · 86210.1587/transele.E94.C.862 ↗
5. Qian X. M. · Chem. Soc. Rev. · 2008 · 37 · 91210.1039/b708839f ↗
6. Notingher I. · Sensors · 2007 · 7 · 134310.3390/s7081343 ↗
7. Matschulat A. · ACS Nano · 2010 · 4 · 325910.1021/nn100280z ↗
8. Zhang Y. · Small · 2011 · 7 · 326110.1002/smll.201100597 ↗
9. Hering K. · Anal. Bioanal. Chem. · 2008 · 390 · 11310.1007/s00216-007-1667-3 ↗
10. Wang Y. · Trends Biotechnol. · 2011 · 29 · 20510.1016/j.tibtech.2011.01.008 ↗
11. Zhang W. · Biomaterials · 2011 · 32 · 855510.1016/j.biomaterials.2011.07.071 ↗
12. Dai H. J. · J. Am. Chem. Soc. · 2011 · 133 · 682510.1021/ja2010175 ↗
13. Liu Z. A. · Nano Lett. · 2010 · 10 · 331810.1021/nl100996u ↗
14. Dai H. J. · J. Am. Chem. Soc. · 2008 · 130 · 1087610.1021/ja803688x ↗
15. Yang X. Y. · J. Mater. Chem. · 2011 · 21 · 344810.1039/C0JM02494E ↗
16. Zhang L. · Small · 2010 · 6 · 53710.1002/smll.200901680 ↗
17. Zhao G. · Adv. Mater. · 2011 · 23 · 395910.1002/adma.201101007 ↗
18. Zhang Y. · ACS Nano · 2010 · 4 · 730310.1021/nn1024219 ↗
19. Yu X. X. · ACS Nano · 2011 · 5 · 95210.1021/nn102291j ↗
20. Huang X. · Small · 2011 · 7 · 187610.1002/smll.201002009 ↗
21. Huang J. · Nanoscale · 2010 · 2 · 273310.1039/c0nr00473a ↗
22. Fu X. · Nanoscale · 2010 · 2 · 146110.1039/c0nr00135j ↗
23. Tjoa V. · J. Mater. Chem. · 2011 · 21 · 1559310.1039/c1jm12676h ↗
24. Zhang Z. · Chem. Commun. · 2011 · 47 · 644010.1039/c1cc11125f ↗
25. Ren W. · ACS Nano · 2011 · 5 · 642510.1021/nn201606r ↗
26. Zhang H. · Chem. Sci. · 2011 · 2 · 181710.1039/c1sc00254f ↗
27. Lu L. H. · ACS Appl. Mater. Inter. · 2011 · 3 · 294410.1021/am200737b ↗
28. Kelemen L. E. · Int. J. Cancer · 2006 · 119 · 24310.1002/ijc.21712 ↗
29. Hu S. H. · Adv. Mater. · 2012 · 24 · 174810.1002/adma.201104070 ↗
30. Castillo J. J. · J. Mater. Chem. B · 2013 · 1 · 147510.1039/c2tb00434h ↗
31. Mandal S. · Colloid Polym. Sci. · 2011 · 289 · 26910.1007/s00396-010-2343-2 ↗
32. Georgakilas V. · Chem. Rev. · 2012 · 112 · 615610.1021/cr3000412 ↗
33. Pan Y. Z. · Adv. Funct. Mater. · 2011 · 21 · 275410.1002/adfm.201100078 ↗
34. Guo W. J. · J. Controlled Release · 2001 · 77 · 13110.1016/S0168-3659(01)00456-4 ↗
35. Hummers W. S. · J. Am. Chem. Soc. · 1958 · 80 · 133910.1021/ja01539a017 ↗
36. Kovtyukhova N. I. · Chem. Mater. · 1999 · 11 · 77110.1021/cm981085u ↗
37. Zhang X. K. · Biomaterials · 2009 · 30 · 604110.1016/j.biomaterials.2009.07.025 ↗
38. Pasricha R. · Small · 2009 · 5 · 225310.1002/smll.200900726 ↗
39. Jasuja K. · ACS Nano · 2009 · 3 · 235810.1021/nn900504v ↗
40. Xu C. · Small · 2009 · 5 · 221210.1002/smll.200900548 ↗
41. Zhou X. Z. · J. Phys. Chem. C · 2009 · 113 · 1084210.1021/jp903821n ↗
42. Faria A. F. · Chem. Mater. · 2012 · 24 · 408010.1021/cm301939s ↗
43. Granatier J. · J. Phys. Chem. C · 2012 · 116 · 1415110.1021/jp3030733 ↗
44. Hu C. F. · Carbon · 2013 · 51 · 25510.1016/j.carbon.2012.08.051 ↗
45. Zhang J. L. · J. Mater. Chem. · 2010 · 20 · 1082410.1039/c0jm02440f ↗
46. Oh J. M. · Adv. Funct. Mater. · 2009 · 19 · 161710.1002/adfm.200801127 ↗
47. Stokes R. J. · Appl. Spectrosc. · 2008 · 62 · 37110.1366/000370208784046812 ↗
48. Lok C. N. · J. Proteome Res. · 2006 · 5 · 91610.1021/pr0504079 ↗
49. Wigginton N. S. · Environ. Sci. Technol. · 2010 · 44 · 216310.1021/es903187s ↗
50. Cui J. H. · J. Mater. Chem. · 2012 · 22 · 812110.1039/c2jm16441h ↗
51. Lu W. T. · Chem. Phys. Lett. · 2010 · 487 · 9210.1016/j.cplett.2010.01.027 ↗
52. Sudimack J. · Adv. Drug Delivery Rev. · 2000 · 41 · 14710.1016/S0169-409X(99)00062-9 ↗
53. Choi H. · Acad. Radiol. · 2004 · 11 · 99610.1016/j.acra.2004.04.018 ↗
54. Loh K. P. · Nat. Chem. · 2010 · 2 · 101510.1038/nchem.907 ↗
55. Pal S. · Chem. Commun. · 2009 · 605910.1039/b911069k ↗
56. Huang P. · Biomaterials · 2011 · 32 · 979610.1016/j.biomaterials.2011.08.086 ↗
57. Kneipp K. · Acc. Chem. Res. · 2006 · 39 · 44310.1021/ar050107x ↗
58. Anderson N. · Nano Lett. · 2006 · 6 · 74410.1021/nl0600023 ↗
59. Zavaleta C. L. · Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. · 2009 · 106 · 1351110.1073/pnas.0813327106 ↗
60. Liu Z. M. · Phys. Chem. Chem. Phys. · 2013 · 15 · 296110.1039/c2cp43715e ↗
61. Dieing T. · Vib. Spectrosc. · 2008 · 48 · 2210.1016/j.vibspec.2008.03.004 ↗
62. Wang Z. Y. · Biosens. Bioelectron. · 2011 · 26 · 288310.1016/j.bios.2010.11.032 ↗