journal article·2011-03-22Open access

Label-Free Biosensing Based on Multilayer Fluorescent Nanocomposites and a Cationic Polymeric Transducer

Danny Brouard, Mathieu L. Viger, A. Guillermo Bracamonte, Denis Boudreau

ACS Nano· Volume 5· Issue 3

Abstract

This study describes the preparation and characterization of a DNA sensing architecture combining the molecular recognition capabilities of a cationic conjugated polymer transducer with highly fluorescent core-shell nanoparticles (NPs). The very structure of the probe-labeled NPs and the polymer-induced formation of NP aggregates maximize the proximity between the polymer donor and acceptor NPs that is required for optimal resonant energy transfer. Each hybridization event is signaled by a potentially large number of excited reporters following the efficient plasmon-enhanced energy transfer between target-activated polymer transducer and fluorophores located in the self-assembled core-shell aggregates, resulting in direct molecular detection of target nucleic acids at femtomolar concentrations.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline

Research context

OpenAlex topics: Advanced biosensing and bioanalysis techniques · Luminescence and Fluorescent Materials · Analytical Chemistry and Sensors

SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.

Affiliations

Département de chimie and Centre d’optique, photonique et laser (COPL), Université Laval, Québec (QC), Canada G1V 0A6.

References (55)

Show source-provided references
1. Brettell T. A. · Anal. Chem. · 2009 · 81 · 469510.1021/ac9008786 ↗
2. Palacios G. · Emerg. Infect. Dis. · 2007 · 13 · 7310.3201/eid1301.060837 ↗
3. Deligeorgiev T. G. · Recent Pat. Mater. Sci. · 2009 · 2 · 110.2174/1874464810902010001 ↗
4. Dylla-Spears R. · Anal. Chem. · 2009 · 81 · 1004910.1021/ac9019895 ↗
5. Meng X. · Talanta · 2010 · 80 · 172510.1016/j.talanta.2009.10.013 ↗
6. Summersgill B. · Nat. Protoc. · 2008 · 3 · 22010.1038/nprot.2007.534 ↗
7. Vora G. J. · Mol. Cell. Probes · 2008 · 22 · 29410.1016/j.mcp.2008.07.002 ↗
8. Dalavoy T. S. · Lab Chip · 2008 · 8 · 78610.1039/b718624j ↗
9. Bustin S. A. · J. Mol. Endocrinol. · 2002 · 29 · 2310.1677/jme.0.0290023 ↗
10. Bustin S. A. · J. Mol. Endocrinol. · 2005 · 34 · 59710.1677/jme.1.01755 ↗
11. Murphy J. · Int. Drug Discovery · 2010 · 5 · 12
12. Halford W. P. · Nat. Biotechnol. · 1999 · 17 · 83510.1038/12783 ↗
13. Wilke W. W. · Diagn. Microbiol. Infect. Dis. · 1995 · 21 · 18110.1016/0732-8893(95)00041-8 ↗
14. Saiki R. K. · Science · 1985 · 230 · 135010.1126/science.2999980 ↗
15. Fan X. · Anal. Chim. Acta · 2008 · 620 · 810.1016/j.aca.2008.05.022 ↗
16. Doré K. · Rev. Fluoresc. · 2009 · 17910.1007/978-0-387-88722-7_9 ↗
17. Yao G. · Anal. Bioanal. Chem. · 2006 · 385 · 51810.1007/s00216-006-0452-z ↗
18. Imhof A. · J. Phys. Chem. B · 1999 · 103 · 140810.1021/jp983241q ↗
19. Gill R. · Angew. Chem., Int. Ed. · 2008 · 47 · 760210.1002/anie.200800169 ↗
20. Smith J. E. · Anal. Chem. · 2007 · 79 · 307510.1021/ac062151b ↗
21. Viger M. L. · Plasmonics · 2008 · 3 · 3310.1007/s11468-007-9051-x ↗
22. Lessard-Viger M. · Nano Lett. · 2009 · 9 · 306610.1021/nl901553u ↗
23. Stranik O. · Proc. SPIE: Int. Soc. Opt. Eng. · 2005 · 5824 · 7910.1117/12.606520 ↗
24. Aslan K. · J. Am. Chem. Soc. · 2007 · 129 · 152410.1021/ja0680820 ↗
25. Tovmachenko O. G. · Adv. Mater. · 2006 · 18 · 9110.1002/adma.200500451 ↗
26. Cheng D. · Chem. Commun. · 2007 · 24810.1039/B612401A ↗
27. Bardhan R. · ACS Nano · 2009 · 3 · 74410.1021/nn900001q ↗
28. Martini M. · J. Phys. Chem. C · 2009 · 113 · 1766910.1021/jp9044572 ↗
29. Reil F. · Nano Lett. · 2008 · 8 · 412810.1021/nl801480m ↗
30. Zhang J. · J. Phys. Chem. C · 2007 · 111 · 1178410.1021/jp067887r ↗
31. Zhang J. · J. Phys. Chem. C · 2007 · 111 · 5010.1021/jp062665e ↗
32. Xie H. Y. · Phys. Rev. B · 2009 · 80 · 155448/1
33. Ho H.-A. · Angew. Chem., Int. Ed. · 2002 · 41 · 154810.1002/1521-3773(20020503)41:9<1548::AID-ANIE1548>3.0.CO;2-I ↗
34. Doré K. · J. Am. Chem. Soc. · 2004 · 126 · 424010.1021/ja038900d ↗
35. Liu B. · Chem. Mater. · 2004 · 16 · 446710.1021/cm049587x ↗
36. Ho H. A. · J. Am. Chem. Soc. · 2005 · 127 · 1267310.1021/ja053417j ↗
37. Gaylord B. S. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 2002 · 99 · 1095410.1073/pnas.162375999 ↗
38. Wang Y. · Chem. Commun. · 2007 · 355310.1039/b705936a ↗
39. Doré K. · J. Fluoresc. · 2006 · 16 · 25910.1007/s10895-006-0098-4 ↗
40. Xia F. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 2010 · 107 · S10837/1
41. Elghanian R. · Science · 1997 · 277 · 107810.1126/science.277.5329.1078 ↗
42. Zhang J. · Nano Lett. · 2007 · 7 · 210110.1021/nl071084d ↗
43. Zhang J. · J. Phys. Chem. C · 2008 · 112 · 1810.1021/jp074938r ↗
44. Liu S. · Adv. Funct. Mater. · 2005 · 15 · 96110.1002/adfm.200400427 ↗
45. Liu S. · Anal. Chem. · 2005 · 77 · 259510.1021/ac0482864 ↗
46. Dubus S. · Anal. Chem. · 2006 · 78 · 445710.1021/ac060486n ↗
47. Geddes C. D. · 2005 · 810.1007/b101259 ↗
48. Lakowicz J. R. · 199910.1007/978-1-4757-3061-6 ↗
49. Tang F. · Langmuir · 2010 · 26 · 1177410.1021/la101714q ↗
50. Pan S. · Proc. SPIE: Int. Soc. Opt. Eng. · 2005 · 5927 · 592705/1
51. Park H.-J. · Appl. Phys. Lett. · 2007 · 90 · 161107/1
52. Li H. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 2004 · 101 · 1403610.1073/pnas.0406115101 ↗
53. Liu Z. · Appl. Phys. Lett. · 1998 · 72 · 182310.1063/1.121196 ↗
54. Hu M. · J. Phys. Chem. C · 2010 · 114 · 750910.1021/jp911416a ↗
55. Ringler M. · Phys. Rev. Lett. · 2008 · 100 · 203002/110.1103/PhysRevLett.100.203002 ↗