journal article·2014-07-22Open access

Fabrication of Corona-Free Nanoparticles with Tunable Hydrophobicity

Daniel F. Moyano, Krishnendu Saha, Gyan Prakash, Bo Yan, Hao Kong, Mahdieh Yazdani, Vincent M. Rotello

ACS Nano· Volume 8· Issue 7

Abstract

A protein corona is formed at the surface of nanoparticles in the presence of biological fluids, masking the surface properties of the particle and complicating the relationship between chemical functionality and biological effects. We present here a series of zwitterionic NPs of variable hydrophobicity that do not adsorb proteins at moderate levels of serum protein and do not form hard coronas at physiological serum concentrations. These particles provide platforms to evaluate nanobiological behavior such as cell uptake and hemolysis dictated directly by chemical motifs at the nanoparticle surface.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline

Research context

OpenAlex topics: Nanoparticle-Based Drug Delivery · Polymer Surface Interaction Studies · Characterization and Applications of Magnetic Nanoparticles

SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.

Affiliations

Department of Chemistry, University of Massachusetts Amherst, 710 North Pleasant Street, Amherst, Massachusetts 01003, United States

Funding

National Institutes of Health · Center for Hierarchical Manufacturing, National Science Foundation

References (57)

Show source-provided references
1. Sapsford K. E. · Chem. Rev. · 2013 · 113 · 190410.1021/cr300143v ↗
2. Mout R. · Chem. Soc. Rev. · 2012 · 41 · 253910.1039/c2cs15294k ↗
3. Khlebtsov N. · Chem. Soc. Rev. · 2011 · 40 · 164710.1039/C0CS00018C ↗
4. Kim S. T. · Acc. Chem. Res. · 2013 · 46 · 68110.1021/ar3000647 ↗
5. He X. X. · Anal. Chem. · 2008 · 80 · 959710.1021/ac801882g ↗
6. Alexis F. · Mol. Pharmaceutics · 2008 · 5 · 50510.1021/mp800051m ↗
7. Walkey C. D. · Chem. Soc. Rev. · 2012 · 41 · 278010.1039/C1CS15233E ↗
8. Monopoli M. P. · Nat. Nanotechnol. · 2012 · 7 · 77910.1038/nnano.2012.207 ↗
9. Del Pino P. · Mater. Horiz. · 2014 · 1 · 30110.1039/C3MH00106G ↗
10. Pelaz B. · Small · 2013 · 9 · 157310.1002/smll.201201229 ↗
11. Mahmoudi M. · Chem. Rev. · 2011 · 111 · 561010.1021/cr100440g ↗
12. Lundqvist M. · Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. · 2008 · 105 · 1426510.1073/pnas.0805135105 ↗
13. Aggarwal P. · Adv. Drug Delivery Rev. · 2009 · 61 · 42810.1016/j.addr.2009.03.009 ↗
14. Tenzer S. · Nat. Nanotechnol. · 2013 · 8 · 77210.1038/nnano.2013.181 ↗
15. Mirshafiee V. · Chem. Commun. · 2013 · 49 · 255710.1039/c3cc37307j ↗
16. Salvati A. · Nat. Nanotechnol. · 2013 · 8 · 13710.1038/nnano.2012.237 ↗
17. Lesniak A. · ACS Nano · 2012 · 6 · 584510.1021/nn300223w ↗
18. Zhu Z. J. · Small · 2012 · 8 · 265910.1002/smll.201200794 ↗
19. Jokerst J. V. · Nanomedicine · 2011 · 6 · 71510.2217/nnm.11.19 ↗
20. Karakoti A. S. · Angew. Chem., Int. Ed. · 2011 · 50 · 198010.1002/anie.201002969 ↗
21. Hamad I. · ACS Nano · 2010 · 4 · 662910.1021/nn101990a ↗
22. Sekiguchi S. · Langmuir · 2012 · 28 · 550310.1021/la300299x ↗
23. Rosen J. E. · Langmuir · 2011 · 27 · 1050710.1021/la201940r ↗
24. Yang W. · Biomaterials · 2009 · 30 · 561710.1016/j.biomaterials.2009.06.036 ↗
25. Cao Z. Q. · Nano Today · 2012 · 7 · 40410.1016/j.nantod.2012.08.001 ↗
26. Murthy A. K. · J. Am. Chem. Soc. · 2013 · 135 · 779910.1021/ja400701c ↗
27. McCormick C. L. · Acc. Chem. Res. · 2004 · 37 · 31210.1021/ar0302484 ↗
28. Matyjaszewski K. · Macromolecules · 2012 · 45 · 401510.1021/ma3001719 ↗
29. Arvizo R. R. · PLoS One · 2011 · 6 · e2437410.1371/journal.pone.0024374 ↗
30. Maiti S. · Chem.—Eur. J. · 2012 · 18 · 1502110.1002/chem.201202398 ↗
31. Zuo G. · ACS Nano · 2010 · 4 · 750810.1021/nn101762b ↗
32. Fubini B. · Nanotoxicology · 2010 · 4 · 34710.3109/17435390.2010.509519 ↗
33. Chompoosor A. · Small · 2010 · 6 · 224610.1002/smll.201000463 ↗
34. Moyano D. F. · J. Am. Chem. Soc. · 2012 · 134 · 396510.1021/ja2108905 ↗
35. Kreuter J. · Vaccine · 1988 · 6 · 25310.1016/0264-410X(88)90220-4 ↗
36. Zhang G. · Biomaterials · 2009 · 30 · 192810.1016/j.biomaterials.2008.12.038 ↗
37. Rana S. · Langmuir · 2012 · 28 · 202310.1021/la204017z ↗
38. Xiao Y. · J. Hazard. Mater. · 2012 · 215 · 14610.1016/j.jhazmat.2012.02.043 ↗
39. Zhang C. · Nat. Mater. · 2013 · 12 · 74110.1038/nmat3647 ↗
40. Milani S. · ACS Nano · 2012 · 6 · 253210.1021/nn204951s ↗
41. Casals E. · Nanomedicine · 2012 · 7 · 191710.2217/nnm.12.169 ↗
42. Monopoli M. P. · Methods Mol. Biol. · 2013 · 1025 · 13710.1007/978-1-62703-462-3_11 ↗
43. Zhu Z.-J. · J. Am. Chem. Soc. · 2008 · 130 · 1413910.1021/ja805392f ↗
44. Mortimer G. M. · ACS Nano · 2014 · 8 · 335710.1021/nn405830g ↗
45. Walkey C. D. · ACS Nano · 2014 · 8 · 243910.1021/nn406018q ↗
46. Walkey C. D. · J. Am. Chem. Soc. · 2012 · 134 · 213910.1021/ja2084338 ↗
47. Gessner A. · Int. J. Pharm. · 2000 · 196 · 24510.1016/S0378-5173(99)00432-9 ↗
48. Baier G. · Macromol. Biosci. · 2011 · 11 · 62810.1002/mabi.201000395 ↗
49. Patil S. · Biomaterials · 2007 · 28 · 460010.1016/j.biomaterials.2007.07.029 ↗
50. Kim C. K. · J. Am. Chem. Soc. · 2009 · 131 · 136010.1021/ja808137c ↗
51. Hühn D. · ACS Nano · 2013 · 7 · 325310.1021/nn3059295 ↗
52. Fleischer C. C. · Biomater. Sci. · 2013 · 1 · 97510.1039/c3bm60121h ↗
53. Xiao W. C. · Contrast Media Mol. Imaging · 2012 · 7 · 32010.1002/cmmi.501 ↗
54. Lin Y. S. · J. Am. Chem. Soc. · 2010 · 132 · 483410.1021/ja910846q ↗
55. Lin Y. S. · Chem. Mater. · 2009 · 21 · 397910.1021/cm901259n ↗
56. Saha K. · Mater. Horiz. · 2014 · 1 · 10210.1039/C3MH00075C ↗
57. Chevallet M. · Nat. Protoc. · 2006 · 1 · 185210.1038/nprot.2006.288 ↗