Lysozyme-Decorated Gold and Molybdenum Bimetallic Nanoclusters for the Selective Detection of Bilirubin as a Jaundice Biomarker
Source abstract
Abstract
Fluorescent nanomaterials have been widely used as sensing probes for the recognition of biological active species or biomarkers. Herein, we have synthesized fluorescent gold and molybdenum bimetallic nanoclusters (Au–Mo NCs) via a one-step reaction using lysozyme (Lys) as a template. The as-synthesized Lys–Au–Mo NCs acted as a fluorescent probe for the specific detection of bilirubin as a jaundice biomarker. The as-fabricated Lys–Au–Mo NCs exhibit a strong emission peak at 642 nm when excited at 490 nm. The Lys–Au–Mo NCs-based fluorescence method exhibited good sensing ability for the detection of bilirubin in the range of 0.125–40.00 μM with a detection limit of 28.26 nM. Furthermore, the as-fabricated Lys–Au–Mo NCs offer a facile and cost-effective analytical strategy for the sensitive identification of bilirubin in biofluids, offering a promising optical probe for the quantification of bilirubin in clinical samples as a jaundice biomarker.
Source: openalex_inverted_index · Quality: baseline
Research context
OpenAlex topics: Neonatal Health and Biochemistry · Neurological Complications and Syndromes · Hemoglobinopathies and Related Disorders
SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.
Affiliations
Department of Chemistry, Sardar Vallabhbhai National Institute of Technology, Surat, 395007 Gujarat, India
Department of Chemical Engineering, Sardar Vallabhbhai National Institute of Technology, Surat, 395007 Gujarat, India
Department of Chemistry, Research Institute of Chem-Bio Diagnostic Technology, Chung-Ang University, 84 Heukseok-ro, Dongjak-gu, Seoul 06974, Republic of Korea
Funding
Science and Engineering Research Board
References (67)
Show source-provided references
1. 10.1111/j.1572-0241.2006.01019.x10.1111/j.1572-0241.2006.01019.x ↗
2. 10.1007/s00535007004410.1007/s005350070044 ↗
3. Silbernagl, S.; Despopoulous, A. Color Atlas of Physiology, 6th ed. Thieme Medical Publishers, 2008; Chapter 13, p 393.10.1055/b-005-148941 ↗
4. 10.1038/srep3900510.1038/srep39005 ↗
5. 10.1021/acsapm.9b0022210.1021/acsapm.9b00222 ↗
6. 10.1016/j.biomaterials.2008.11.02910.1016/j.biomaterials.2008.11.029 ↗
7. 10.1016/j.tsf.2013.09.01510.1016/j.tsf.2013.09.015 ↗
8. 10.1177/10406387110230012110.1177/104063871102300121 ↗
9. 10.1016/j.talanta.2016.03.05310.1016/j.talanta.2016.03.053 ↗
10. 10.1016/j.jchromb.2014.10.02710.1016/j.jchromb.2014.10.027 ↗
11. 10.1016/j.bios.2012.12.03410.1016/j.bios.2012.12.034 ↗
12. 10.1016/j.jpba.2018.09.03410.1016/j.jpba.2018.09.034 ↗
13. 10.1016/j.saa.2019.02.10410.1016/j.saa.2019.02.104 ↗
14. 10.1016/j.jlumin.2012.06.01310.1016/j.jlumin.2012.06.013 ↗
15. 10.1021/acs.analchem.5b0190310.1021/acs.analchem.5b01903 ↗
16. 10.1016/j.bios.2014.04.00310.1016/j.bios.2014.04.003 ↗
17. 10.1021/acs.macromol.5b0004310.1021/acs.macromol.5b00043 ↗
18. 10.1021/acsami.7b0909110.1021/acsami.7b09091 ↗
19. 10.1016/j.bios.2011.08.01210.1016/j.bios.2011.08.012 ↗
20. 10.1016/j.ab.2011.10.02710.1016/j.ab.2011.10.027 ↗
21. 10.1039/C5RA06681F10.1039/C5RA06681F ↗
22. 10.1016/j.bios.2006.07.03510.1016/j.bios.2006.07.035 ↗
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24. 10.1016/j.saa.2018.03.04510.1016/j.saa.2018.03.045 ↗
25. 10.1016/j.aca.2018.05.02610.1016/j.aca.2018.05.026 ↗
26. 10.1021/acs.analchem.8b0405810.1021/acs.analchem.8b04058 ↗
27. 10.1039/C8RA02817F10.1039/C8RA02817F ↗
28. 10.1016/j.snb.2018.08.03210.1016/j.snb.2018.08.032 ↗
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33. 10.1016/j.cclet.2019.05.05110.1016/j.cclet.2019.05.051 ↗
34. 10.1016/j.cclet.2018.07.01110.1016/j.cclet.2018.07.011 ↗
35. 10.1016/j.cclet.2019.07.06710.1016/j.cclet.2019.07.067 ↗
36. 10.1016/j.bios.2019.05.00410.1016/j.bios.2019.05.004 ↗
37. 10.1016/j.cclet.2019.08.05110.1016/j.cclet.2019.08.051 ↗
38. 10.1039/D0NR08008J10.1039/D0NR08008J ↗
39. 10.1166/mex.2020.163310.1166/mex.2020.1633 ↗
40. 10.1016/j.snb.2018.11.00110.1016/j.snb.2018.11.001 ↗
41. 10.1016/j.molliq.2020.11269710.1016/j.molliq.2020.112697 ↗
42. 10.1016/j.colsurfa.2018.09.03610.1016/j.colsurfa.2018.09.036 ↗
43. 10.1039/C7NJ04031H10.1039/C7NJ04031H ↗
44. 10.1039/C3NR06896J10.1039/C3NR06896J ↗
45. 10.1021/acs.chemrev.6b0021110.1021/acs.chemrev.6b00211 ↗
46. 10.1016/j.colsurfa.2018.07.03810.1016/j.colsurfa.2018.07.038 ↗
47. 10.1021/acs.analchem.7b0189710.1021/acs.analchem.7b01897 ↗
48. 10.1021/acsbiomaterials.6b0051710.1021/acsbiomaterials.6b00517 ↗
49. 10.1088/2053-1591/aac86710.1088/2053-1591/aac867 ↗
50. 10.1039/c3nr06123j10.1039/c3nr06123j ↗
51. 10.1039/C7AN01343D10.1039/C7AN01343D ↗
52. 10.1021/jacs.6b0224710.1021/jacs.6b02247 ↗
53. 10.1016/j.snb.2016.03.12910.1016/j.snb.2016.03.129 ↗
54. 10.1039/C8RA02118J10.1039/C8RA02118J ↗
55. 10.1039/C7AY02372C10.1039/C7AY02372C ↗
56. 10.1021/ac402376410.1021/ac4023764 ↗
57. 10.1021/acs.analchem.6b0254310.1021/acs.analchem.6b02543 ↗
58. 10.1021/jp402318410.1021/jp4023184 ↗
59. 10.1039/C3NR06040C10.1039/C3NR06040C ↗
60. 10.1016/j.msec.2019.01.02910.1016/j.msec.2019.01.029 ↗
61. 10.1007/s00604-019-3230-210.1007/s00604-019-3230-2 ↗
62. 10.1016/j.jmat.2015.03.00310.1016/j.jmat.2015.03.003 ↗
63. 10.1039/C5TB02322J10.1039/C5TB02322J ↗
64. 10.1007/s00604-017-2612-610.1007/s00604-017-2612-6 ↗
65. 10.1021/acsabm.1c0037110.1021/acsabm.1c00371 ↗
66. 10.1016/j.talanta.2011.09.03410.1016/j.talanta.2011.09.034 ↗
67. 10.1016/j.bios.2016.12.02610.1016/j.bios.2016.12.026 ↗