journal article·2021

Quantum dots in cell imaging and their safety issues

Quan Xu, Jiajia Gao, Siyang Wang, Yi Wang, Dong Liu, Juncheng Wang

Journal of Materials Chemistry B· Volume 9· Issue 29
Publisher page

Abstract

When quantum dots are used as fluorescent probes or drug tracers for in vivo imaging, the quantum dots in the blood will come into direct contact with vascular endothelial cells. Thus, it is necessary to study whether quantum dots can affect endothelial function after being injected into blood vessels as imaging agents. In recent years, there have been numerous studies on the toxicity of quantum dots. Herein, we focused on five types of quantum dots (Cd-containing quantum dots, CuInS2 quantum dots, black phosphorus quantum dots, MXene quantum dots, and carbon-based quantum dots) for cell imaging and their toxicity in vivo and in vitro. Although current research on the toxicity of quantum dots has not reached a consistent conclusion, it can guide the next step in evaluating their cytotoxicity.
Source: openalex_inverted_index · Quality: candidate unverified · Source record ↗

Research context

OpenAlex topics: Quantum Dots Synthesis And Properties · Carbon and Quantum Dots Applications · Nanocluster Synthesis and Applications

SciVX discovery tags are terminology-based. OpenAlex topics are source-provided classifications.

Affiliations

State Key Laboraty of Heavy Oil Processing

Beijing Key Laboratory of Biogas Upgrading Utilization

China University of Petroleum-Beijing

Beijing

China

Strategic Support Force Medical Center Clinical Laboratory

Department of Stomatology

First Medical Center

Chinese PLA General Hospital

Funding

National Natural Science Foundation of China · Science Foundation of China University of Petroleum, Beijing

References (100+)

Show source-provided references
1. Wilhelm · Nature · 2016 · 529 · 21610.1038/nature16498 ↗
2. Jamwal · Inflammation Res. · 2018 · 67 · 39110.1007/s00011-018-1129-8 ↗
3. Dignat–George · Eur. J. Haematol · 2000 · 65 · 21510.1034/j.1600-0609.2000.065004215.x ↗
4. Leung · Appl. Spectrosc. · 2011 · 65 · 96710.1366/11-06398 ↗
5. Owen · Front. Plant Sci. · 2013 · 4 · 0050310.3389/fpls.2013.00503 ↗
6. Tu · Chin. Chem. Lett. · 2019 · 30 · 173110.1016/j.cclet.2019.05.022 ↗
7. Freidus · Drug Discovery Today · 2018 · 23 · 11510.1016/j.drudis.2017.09.008 ↗
8. Reiber · Eur. J. Org. Chem. · 2021 · 1
9. Laxman · Front. Chem · 2021 · 9 · 64135510.3389/fchem.2021.641355 ↗
10. Choi · Angew. Chem., Int. Ed. · 2011 · 50 · 625810.1002/anie.201102459 ↗
11. Grimm · Nat. Methods · 2015 · 12 · 24410.1038/nmeth.3256 ↗
12. Liu · J. Am. Chem. Soc. · 2016 · 138 · 696010.1021/jacs.6b03924 ↗
13. Zhou · J. Mater. Sci. Eng · 2020 · 38 · 680
14. Yuan · Biomater. Sci. · 2021 · 9 · 32810.1039/D0BM01038C ↗
15. Zhou · Polym. Chem. · 2019 · 10 · 382210.1039/C9PY00322C ↗
16. Chan · Science · 1998 · 281 · 201610.1126/science.281.5385.2016 ↗
17. Gerion · Nano Lett. · 2004 · 4 · 59710.1021/nl035231t ↗
18. Sukhanova · Anal. Biochem. · 2004 · 324 · 6010.1016/j.ab.2003.09.031 ↗
19. Wu · Nat. Biotechnol. · 2002 · 21 · 4110.1038/nbt764 ↗
20. Kaul · Cell Res. · 2003 · 13 · 50310.1038/sj.cr.7290194 ↗
21. Xiao · Nucleic Acids Res. · 2004 · 32 · e2810.1093/nar/gnh024 ↗
22. Ma · Chromosoma · 2007 · 117 · 18110.1007/s00412-007-0136-2 ↗
23. Panchuk–Voloshina · J. Histochem. Cytochem. · 1999 · 47 · 117910.1177/002215549904700910 ↗
24. Medintz · Nat. Mater. · 2005 · 4 · 43510.1038/nmat1390 ↗
25. Alivisatos · Nat. Biotechnol. · 2003 · 22 · 4710.1038/nbt927 ↗
26. Klostranec · Adv. Mater. · 2006 · 18 · 195310.1002/adma.200500786 ↗
27. Lian · Nano Today · 2020 · 35 · 10094310.1016/j.nantod.2020.100943 ↗
28. Tang · ACS Appl. Mater. Interfaces · 2020 · 12 · 4728910.1021/acsami.0c14636 ↗
29. Drbohlavova · Int. J. Mol. Sci. · 2009 · 10 · 65610.3390/ijms10020656 ↗
30. Nikam · J. Drug Delivery Ther · 2019 · 9 · 67010.22270/jddt.v9i4-s.3333 ↗
31. Li · Nanoscale Horiz. · 2020 · 5 · 21810.1039/C9NH00476A ↗
32. Valizadeh · Nanoscale Res. Lett. · 2012 · 7 · 48010.1186/1556-276X-7-480 ↗
33. Xu · Mater. Today Energy · 2018 · 10 · 22210.1016/j.mtener.2018.09.005 ↗
34. Namdari · Biomed. Pharmacother. · 2017 · 87 · 20910.1016/j.biopha.2016.12.108 ↗
35. Grutzmacher · Nano Lett. · 2007 · 7 · 315010.1021/nl0717199 ↗
36. Holleitner · Phys. Rev. Lett. · 2001 · 87 · 25680210.1103/PhysRevLett.87.256802 ↗
37. Farahani · Phys. Rev. Lett. · 2005 · 95 · 01740210.1103/PhysRevLett.95.017402 ↗
38. Zhou · J. Am. Chem. Soc. · 2007 · 129 · 74410.1021/ja0669070 ↗
39. Sun · J. Am. Chem. Soc. · 2006 · 128 · 775610.1021/ja062677d ↗
40. Gokus · ACS Nano · 2009 · 3 · 396310.1021/nn9012753 ↗
41. Burda · Chem. Rev. · 2005 · 105 · 102510.1021/cr030063a ↗
42. Xu · J. Mater. Chem. A · 2015 · 3 · 54210.1039/C4TA05483K ↗
43. Zhu · Chem. Commun. · 2009 · 511810.1039/b907612c ↗
44. Zhang · Angew. Chem., Int. Ed. · 2015 · 54 · 542510.1002/anie.201501071 ↗
45. Li · Chem. Mater. · 2010 · 22 · 245110.1021/cm902856y ↗
46. Lin · Chem. Phys. Lett. · 2005 · 409 · 20810.1016/j.cplett.2005.05.027 ↗
47. Wang · Environ. Toxicol. Chem. · 2018 · 37 · 138710.1002/etc.4080 ↗
48. Oh · Nat. Nanotechnol. · 2016 · 11 · 47910.1038/nnano.2015.338 ↗
49. Jamieson · Biomaterials · 2007 · 28 · 471710.1016/j.biomaterials.2007.07.014 ↗
50. Parak · Nanotechnology · 2005 · 16 · R910.1088/0957-4484/16/2/R01 ↗
51. Michalet · Science · 2005 · 307 · 53810.1126/science.1104274 ↗
52. Gao · Nat. Biotechnol. · 2004 · 22 · 96910.1038/nbt994 ↗
53. Mansur · Int. J. Nanomed. · 2016 · 11 · 466910.2147/IJN.S115208 ↗
54. Bell · Dose-Response · 2013 · 12 · 202
55. Lovrić · J. Mol. Med. · 2005 · 83 · 37710.1007/s00109-004-0629-x ↗
56. Munari · Mutat. Res. Gen. Toxicol. Environ. · 2014 · 775–776 · 8910.1016/j.mrgentox.2014.09.003 ↗
57. Zhang · J. Nanosci. Nanotechnol. · 2007 · 7 · 49710.1166/jnn.2007.125 ↗
58. Lovrić · Chem. Biol. · 2005 · 12 · 122710.1016/j.chembiol.2005.09.008 ↗
59. Yan · Toxicology · 2011 · 282 · 9410.1016/j.tox.2011.01.015 ↗
60. Yan · Int. J. Nanomed. · 2016 · 11 · 259
61. Tian · Environ. Pollut. · 2019 · 244 · 58810.1016/j.envpol.2018.10.092 ↗
62. Wang · J. Nanosci. Nanotechnol. · 2010 · 10 · 859110.1166/jnn.2010.2681 ↗
63. Kim · RSC Adv. · 2017 · 7 · 1067510.1039/C6RA27045J ↗
64. Kim · J. Nanopart. Res. · 2017 · 19 · 25110.1007/s11051-017-3944-1 ↗
65. Kays · Nano Lett. · 2020 · 20 · 198010.1021/acs.nanolett.9b05259 ↗
66. Sun · Angew. Chem., Int. Ed. · 2015 · 54 · 1152610.1002/anie.201506154 ↗
67. Mu · ACS Appl. Mater. Interfaces · 2017 · 9 · 2039910.1021/acsami.7b02900 ↗
68. He · Small · 2020 · 16 · 1
69. Wang · iScience · 2020 · 23 · 10104410.1016/j.isci.2020.101044 ↗
70. Li · Angew. Chem., Int. Ed. · 2020 · 59 · 210.1002/anie.201914768 ↗
71. Li · Appl. Mater. Today · 2019 · 15 · 29710.1016/j.apmt.2019.02.002 ↗
72. Rafieerad · Mater. Des. · 2020 · 196 · 10909110.1016/j.matdes.2020.109091 ↗
73. Xue · Adv. Mater. · 2017 · 29 · 160484710.1002/adma.201604847 ↗
74. Yu · Nanoscale · 2017 · 9 · 1785910.1039/C7NR05997C ↗
75. Guan · Nanoscale · 2019 · 11 · 1412310.1039/C9NR04421C ↗
76. Yang · Sens. Actuators, B · 2020 · 309 · 12773510.1016/j.snb.2020.127735 ↗
77. Xu · Chem. Commun. · 2020 · 56 · 664810.1039/D0CC02131H ↗
78. Bouzas-Ramos · Adv. Funct. Mater. · 2019 · 29 · 190388410.1002/adfm.201903884 ↗
79. Wang · Food Chem. · 2019 · 286 · 40510.1016/j.foodchem.2019.02.034 ↗
80. Chen · Sci. Bull. · 2020 · 65 · 158010.1016/j.scib.2020.05.021 ↗
81. Eskalen · Ind. Crops Prod. · 2020 · 147 · 11220910.1016/j.indcrop.2020.112209 ↗
82. Liu · Biomaterials · 2020 · 232 · 11970010.1016/j.biomaterials.2019.119700 ↗
83. Yuan · Nanoscale Res. Lett. · 2014 · 9 · 110.1186/1556-276X-9-1 ↗
84. Xie · J. Environ. Sci. · 2019 · 77 · 19810.1016/j.jes.2018.07.014 ↗
85. Peng · J. Am. Chem. Soc. · 2009 · 131 · 569110.1021/ja9005767 ↗
86. Deng · Chem. Mater. · 2012 · 24 · 302910.1021/cm3015594 ↗
87. Liu · Chem. Soc. Rev. · 2015 · 44 · 273210.1039/C4CS00257A ↗
88. Liu · arXiv preprint arXiv · 2014 · 8 · 4033
89. Li · Nat. Nanotechnol. · 2014 · 9 · 37210.1038/nnano.2014.35 ↗
90. Xie · Light: Sci. Appl. · 2020 · 9 · 110.1038/s41377-019-0231-1 ↗
91. Guo · Small · 2018 · 14 · 1
92. Lee · Small · 2016 · 12 · 21410.1002/smll.201502756 ↗
93. Hu · Nat. Commun. · 2020 · 11 · 277810.1038/s41467-020-16513-0 ↗
94. Huang · ACS Appl. Bio Mater. · 2020 · 3 · 212510.1021/acsabm.0c00007 ↗
95. Jastrzębska · 2D Mater. · 2020 · 7 · 02501810.1088/2053-1583/ab6a60 ↗
96. Szuplewska · J. Nanobiotechnology · 2019 · 17 · 110.1186/s12951-019-0545-4 ↗
97. Rasool · ACS Nano · 2016 · 10 · 367410.1021/acsnano.6b00181 ↗
98. Wang · ACS Nano · 2017 · 11 · 1155910.1021/acsnano.7b06476 ↗
99. Cao · ACS Nano · 2019 · 13 · 1499
100. Yan · Chin. Chem. Lett. · 2020 · 31 · 317310.1016/j.cclet.2020.05.020 ↗